DOi:10.13590/j.cjfh.2017.03.011
胶体金免疫层析技术快速检测谷物中3种真菌毒素的研究
曹德康1,苏建忠1,张瑛1,秦璐1,苗银萍2,吴智坚2,张杰2,赵林萍2

(1.武警后勤部疾病预防控制中心,北京102613; 2.郑州中道生物技术有限公司,河南 郑州450000)

作者简介: 曹德康男主任医师研究方向为军事预防医学及环境监测E-mail:13301080538@163.com
通信作者: 苏建忠男主治医师研究方向为卫生监督及环境监测E-mail:wjsjz@139.com

收稿日期: 2017-02-10

基金项目: 武警后勤部卫生局科研课题(WJWSB2015-01)

摘要:目的 应用胶体金免疫层析技术开发一种快速检测谷物中黄曲霉毒素B1(AFB1)、玉米赤霉烯酮(ZEN)和呕吐毒素(DON)的三联检测卡。方法优化胶体金溶液pH值、金标抗体量及抗原包被量制备3种胶体金试纸条,将试纸条组装成检测卡,研究该卡的检测限、准确度、特异性和稳定性。结果AFB1、ZEN和DON 3种试纸条的胶体金溶液最适pH值分别为7.5、7.5和7.0,金标抗体量分别为4.2、7.2和9.6 μg/ml,抗原包被量分别为1.0、1.4和0.8 mg/ml。检测卡的检测结果与仪器检测结果基本一致,重复性较好,与结构类似物及其他霉菌毒素无交叉反应,在室温条件下可以保存12个月。结论该三联检测卡操作简便、快速、准确、稳定,且能同时检测3种真菌毒素,在谷物的现场检测中有较好的应用前景。
关键词:  胶体金免疫层析法; 谷物; 真菌毒素; 检测卡; 快速检测; 食品污染物; 食品安全
中图分类号: R155     文献标识码:A     文章编号:1004-8456(2017)03-0306-07
Research on the rapid detection of three kinds of mycotoxin in grains 
by colloidal gold immunochromatographic method
CAO De-kang1, SU Jian-zhong1, ZHANG Ying1, QIN Lu1, 
MIAO Yin-ping2, WU Zhi-jian2, ZHANG Jie2, ZHAO Lin-ping2

(1.Center for Diseases Control and Prevention of Chinese Peoples Armed Police Forces, Beijing 102613,China; 2.Zhengzhou Zhongdao Biotechnology Co., Ltd,Henan Zhengzhou 450000,China)

Abstract:Objective The colloidal gold immunochromatographic strip was developed to detect aflatoxin B1 (AFB1), zearalenone (ZEN) and deoxynivalenol (DON) in grains. MethodsThe pH of colloidal gold solution and the dosage of the specific antibody and antigen were optimized through three combinations. The limit of quantitation, accuracy, specificity and the stability of the detection strip were investigated. ResultsThe optimal pH of colloidal gold solution for AFB1, ZEN and DON was 7.5, 7.5 and 7.0, respectively. The optimal concentration of antibody marking was 4.2, 7.2 and 9.6 μg/ml, respectively. The optimal concentration of the specific antigen was 1.0, 1.4 and 0.8 mg/ml, respectively. Sixty samples were detected through instrument method and colloidal gold immunochromatographic method simultaneously, and the results were consistent with each other. No cross-reaction was observed with other analogue and mycotoxins, and the triple strip could be stored at room temperature for 12 months. ConclusionThe triple strip was a simple, accurate and stable method for monitoring AFB1, ZEN and DON in grains, and had good application foreground in field analysis.
Key words: Colloidal gold immunochromatographic method; grains; mycotoxin; detection card; rapid detection; food contaminant; food safety
        黄曲霉毒素B1(AFB1)是迄今已知最强的化学致癌物之一[1],可同时诱发多种癌症,此外还具有强烈的致畸性和致突变性[2]。玉米赤霉烯酮(ZEN)会引起雌性激素中毒症,造成生殖系统的严重损伤,还可诱导DNA收缩,导致染色体失常[3]。呕吐毒素(DON)严重影响人的消化系统,具有细胞毒性、免疫毒性和神经毒性[4]。这3种毒素普遍存在于谷物中,超过国家限量标准后,对人类的健康和安全造成严重威胁,在GB 2761—2011《食品安全国家标准 食品中真菌毒素限量》[5]中规定,AFB1在麦仁和小米中的限量值为5 μg/kg、玉米糁中限量值为20 μg/kg、大米中限量值为10 μg/kg;ZEN在谷物及其制品中的限量值均为60 μg/kg;DON在谷物及其制品中的限量值均为1 000 μg/kg,玉米、玉米糁(渣、片)、大麦、小麦、麦片、小麦粉的限量值均为1 000 μg/kg;因此,对谷物中真菌毒素的检测是一项艰巨而重要的任务。
        目前,检测AFB1、ZEN和DON的方法有很多,主要有薄层色谱(TLC)法、气相色谱(GC)法、高效液相色谱(HPLC)法、酶联免疫吸附(ELISA)法和胶体金免疫层析(GICA)法[6-10]。TLC是应用最早、最广泛的检测技术,也是检测真菌毒素最经典的方法。但其灵敏度低、重现性差、操作繁琐、时间长且安全性差。GC和HPLC可以对样品中真菌毒素进行精确定量,而且结果稳定,是最权威的方法,但前处理相对复杂,检测周期长,需要昂贵的仪器并耗费大量人力。ELISA操作相对简单、灵敏度高,但也需要专门仪器,耗时较长。此外,以上检测技术均为单一指标检测,不能同时检测多种真菌毒素。针对上述检测技术的不足,本试验应用胶体金免疫层析法研制AFB1、ZEN和DON检测试纸条并组装成三联检测卡,检测谷物中污染的真菌毒素。该法操作简单、快速,不需要专业人员和仪器设备,适合现场检测,值得推广应用。
1材料与方法
1.1材料
1.1.1样品来源
        北京市某超市、某集贸市场购买的小米、玉米糁、麦仁和大米,各15份。
1.1.2主要仪器与试剂
        HM3030型XYZ三维划膜喷金仪(上海金标)、紫外可见分光光度计(上海美谱达仪器有限公司)、真空干燥箱、低温高速离心机、ZQ3500型数控快速斩切机、恒温培养箱、切条机、磁力搅拌器、pH计。
        AFB1单克隆抗体、ZEN单克隆抗体、DON单克隆抗体、AFB1-牛血清白蛋白(BSA)、ZEN-BSA、DON-BSA、山羊抗小鼠IgG均购自洛阳佰奥通生物技术有限公司,AFB1[GBW(E)100302]、ZEN[GBW(E)100301]、DON[GBW(E)100383]标准品均购自国家标准物质中心,硝酸纤维素膜(NC膜,德国赛多利斯),聚氯乙烯(PVC)底板、样品垫、吸水纸、玻璃纤维均购自上海金标生物公司,氯金酸(美国Sigma),碳酸钾,柠檬酸三钠,阴性样品:仪器方法确定的不含AFB1、ZEN和DON的小米、玉米糁、麦仁和大米。
1.2方法
1.2.1胶体金的制备
        用超纯水将1.0%氯金酸稀释成0.01%,置于磁力搅拌器上搅拌煮沸,迅速加入1.0 ml 1%柠檬酸三钠,继续加热煮沸15 min,溶液由灰色变成黑色,随后稳定成红色。关闭加热电源,冷却至室温后用超纯水补足体积,用紫外可见分光光度计扫描来估算金颗粒的大小,4 ℃条件下保存备用。
1.2.2胶体金溶液最适pH值的确定
        取10支5 ml玻璃小试管,分别加入1.0 ml胶体金溶液,用0.1 mol/L的K2CO3调节pH值为5.5、6.0、6.5、7.0、7.5、8.0、8.5、9.0、9.5、10.0,每管加入10 μg AFB1单克隆抗体。混匀并静置10 min后,分别加入100 μl 10%NaCl溶液,混匀后静置2 h,观察溶液颜色的变化。溶液保持红色的最低pH值可确定为胶体金溶液的最适pH值。胶体金结合ZEN和DON单克隆抗体的最适pH值也按此方法确定。
1.2.3抗体标记量的确定
        3种抗体分别选择1.2.2中确定的最适pH值的胶体金溶液,各取9管,每管1.0 ml。加入不同量的抗体,AFB1单克隆抗体加入量的范围为20~55 μl(抗体浓度0.1 mg/ml),ZEN和DON单克隆抗体加入量的范围均为2.0~16 μl(抗体浓度1.0 mg/ml),补足体积至1.1 ml,对照管仅加0.1 ml稀释液,混匀。5 min后,在各管加入0.1 ml 10% NaCl溶液,混匀后静置2 h,观察溶液颜色的变化。溶液保持红色的最低抗体量可确定为稳定胶体金的最低抗体量。在最低抗体量的基础上再增加10%~20%即为胶体金标记的最佳抗体量[11]
1.2.4检测线最佳浓度的确定
        将1.0 mg/ml的山羊抗小鼠IgG包被在NC膜的质控线(C线)上,同时将AFB1-BSA、ZEN-BSA和DON-BSA分别梯度稀释成0.4、0.6、0.8、1.0、1.2、1.4和1.6 mg/ml 7个浓度包被在NC膜的检测线(T线)上,喷量均为1.0 μl/cm,间距为5 mm,37 ℃干燥2 h,作为试纸条的检测区,与最适条件下制备的结合垫组装成试纸条。
AFB1检测浓度为0、0.5、1.0和2.0 ng/ml的标准品,ZEN检测浓度为0、5.0、10和20 ng/ml的标准品,DON检测浓度为0、100、200和300 ng/ml 的标准品,比较AFB1-BSA/ZEN-BSA/DON-BSA浓度的变化对试纸条检测结果的影响。选择检测线最佳浓度的标准如下:阴性溶液[0.01 mol pH=7.4 磷酸盐(PBS)缓冲液]滴定时,C线和T线显色深度适中,两线显色一致或T线显色大于C线;用标准品滴定时,试纸条灵敏度越高越好。
1.2.5胶体金免疫层析试纸条和三联检测卡的组装
        将胶体金标记的单克隆抗体(以下简称金标抗体)喷在玻璃纤维上制成结合垫,将完全抗原和山羊抗小鼠IgG包被于NC膜上,分别作为T线和C线。经处理的样品垫(1.5 cm×10 cm)、结合垫(1.5 cm×10 cm)、NC膜(2.5 cm×10 cm)和吸水垫(1.5 cm×10 cm)每两部分以2 mm重叠,依次粘在PVC底板(6 cm×5 cm)上,用切条机切成宽3 mm的胶体金免疫层析试纸条,其侧面结构示意图见图1。将3种试纸条按指定位置放入三联检测卡卡槽内,盖上卡盖,组装成三联检测卡(见图2)。
注:1为样品垫;2为结合垫;3为NC膜;
4为吸水垫;5为PVC底板  
  图1试纸条侧面结构示意图
Figure 1Sketch map of test strip of side structure
图2真菌毒素三联检测卡实物图
Figure 2Physical map of triple detection card 
of mycotoxin    
1.2.6谷物中3种真菌毒素的检测
        将玉米糁粉碎后过0.850 mm筛孔的筛子。称取2.0 g样品置于50 ml的离心管中,加入4.0 ml的甲醇-PBS缓冲液(7∶3,V/V),充分振荡5 min,5 000 r/min离心6 min。取上清液0.2 ml加入0.8 ml PBS缓冲液稀释5倍作为待测液。
用滴管吸取待测液滴加于加样孔中,每孔2~3滴。加样后开始计时,结果应在5~8 min读取,其他时间判读无效。读取结果时,检测卡中每个试纸条结果解释见图3。
注:阴性:在观察孔内,检测线(T线)及质控线(C线)均显色;
阳性:在观察孔内,只有C线显色,T线不显色;失效:在观察
孔内,C线和T线都不显色,或仅T线显色
图3试纸条检测区结果判定示意图
Figure 3Sketch map of judgements of the results of test strip    
1.2.7三联检测卡的质量评价
        不同种类样品中3种毒素检测限的确定:4种阴性样品(小米、玉米糁、麦仁和大米)分别取15份,每份2.0 g。分别加入不同浓度的AFB1、ZEN和DON标准品,AFB1加入标准品的浓度分别为0、2.5、5.0、10和20 ng/g,ZEN加入标准品的浓度0、15、30、60和90 ng/g,DON加入标准品的浓度为0、500、750、1 000和1 500 ng/g,每个浓度做3次重复。按照1.2.6方法检测样品中毒素含量。
        与HPLC法比较:按照1.2.6方法检测样品中3种毒素含量,大于等于检测限的判为阳性,反之判为阴性。同时用HPLC法分别检测样品中的ZEN[12]、DON[13]和AFB1[14],根据国家规定的真菌毒素在谷物中的限量标准判定结果[5]
        特异性试验:通过与结构类似物及其他霉菌毒素的交叉反应试验来研究。用含15%甲醇的PBS缓冲液分别将AFB1、AFM1、AFB2、DON、赭曲霉毒素A、T-2毒素、ZEN、玉米赤霉醇制备成浓度为1.0、5.0、100和500 ng/ml的溶液,用三联检测卡进行检测。
        稳定性试验:将三联检测卡置于铝箔袋中,加干燥剂密闭包装,放于37 ℃条件下保存8周。分别在第1天、第2天、第4天、第7天以及之后的每周取出三联检测卡检测含15%甲醇的PBS缓冲液及浓度为100 ng/ml的3种标准品溶液。观察T线、C线的显色强度、稳定性情况及金标抗体的释放情况。
2结果与分析
2.1胶体金颗粒的特征
        胶体金溶液为澄清的酒红色,未发现漂浮物及颗粒沉淀物,用紫外可见分光光度计扫描可知(见 图4),紫外扫描的最大吸收峰波长为525 nm。根据回归方程y=0.4271x+514.56计算[15],得到胶体金颗粒直径大小为25 nm。
2.2胶体金溶液最适pH值的确定
        不同pH值的胶体金溶液与抗体结合,若pH值未达到同蛋白结合的最适点时,胶体金会聚沉,溶液由红色变为蓝色,保持红色的最低pH值作为最适pH值。由此可知,AFB1金标抗体、ZEN金标抗体的最适pH值均为7.5, DON金标抗体的最适pH值为7.0。
图4胶体金颗粒紫外扫描图
Figure 4Determnation of colloidal gold by 
spectrophotometry    
2.3抗体标记量的确定
        取一系列pH值为7.5(AFB1和ZEN抗体最适)和7.0(DON抗体最适)的胶体金溶液,确定了3种抗体最适标记量,结果见表1。可以看出,向1 ml胶体金溶液中加入AFB1抗体量≥3.5 μg,或加入ZEN抗体量≥6 μg,或加入DON抗体量≥8 μg,溶液稳定,颜色由蓝色变为稳定的红色。在此基础上,增加20%的蛋白量即为最适抗体用量[11]。因此,AFB1、ZEN和DON抗体的最适浓度分别为4.2、7.2和9.6 μg/ml。
表1AFB1、ZEN和DON抗体标记量的确定
Table 1Making certain the quantity of labeling antibody for AFB1, ZEN, DON    
2.4T线最佳浓度的确定
        C线山羊抗小鼠IgG包被浓度为1.0 mg/ml,当T线AFB1-BSA包被量为1.0 mg/ml,AFB1试纸条显色较好,加标后有明显的梯度,标准品浓度≥1.0 ng/ml时,试纸条检测为阳性;当T线ZEN-BSA包被量为1.4 mg/ml,加标后有明显的梯度,标准品浓度≥5.0 ng/ml时,试纸条检测为阳性;当T线DON-BSA包被量为0.8 mg/ml,加标后有明显的梯度,标准品浓度≥100 ng/ml时,试纸条检测为阳性。由此可见AFB1、ZEN和DON试纸条的灵敏度依次为1.0、5.0、100 ng/ml。
2.5三联检测卡的质量评价
2.5.1样品检测限的确定
        如表2所示,阴性样品小米和麦仁中,AFB1加入浓度为2.5 ng/g时,结果显示阴性,而加入5.0 ng/g 及以上浓度时,结果为阳性,说明样品检测限为5.0 ng/g。同理,阴性样品玉米糁和大米中AFB1的检测限均为10 ng/g,说明不同样品中AFB1的检测限不完全相同。而在小米、玉米糁、麦仁和大米4种样品中,ZEN的检测限均为60 ng/g,DON的检测限均为1 000 ng/g。所有检测项目重复3次试验,结果均一致,试验重复性较好。
 表2谷物中3种真菌毒素检测限的确定
Table 2Results of detection limit determination of three kinds test strip   
2.5.2与HPLC法比较
        检测样品中AFB1、ZEN和DON时,两种方法结果均一致,阳性率分别为33.3%(20/60)、38.3%(23/60)和33.3%(20/60)。4种样品中,玉米糁受3种毒素污染的情况最为严重,阳性样品数分别为7份(AFB1)、9份(ZEN)和7份(DON),阳性率依次为46.7%(7/15)、60.0%(9/15)和46.7%(7/15),小米受污染情况最轻,阳性样品数分别为4份(AFB1)、3份(ZEN)和2份(DON),阳性率分别为26.7%(4/15)、20.0%(3/15)和13.3%(2/15)。结果见表3。
 表3GICA法和HPLC法检测谷物结果比较(ng/g)
Table 3Comparison of detecting results between GICA and HPLC   
2.5.3特异性试验
        3种试纸条检测各自浓度小于灵敏度的标准品时,结果为阴性,检测浓度大于等于灵敏度的标准品时,结果为阳性;但检测浓度为1.0、5.0、100和500 ng/ml的结构类似物及其他霉菌毒素时,结果均为阴性,表明试纸条的特异性较好,并且3种真菌毒素之间没有交叉反应。结果见表4。
2.5.4稳定性试验
        检测卡于37 ℃条件下保存8周,检测阴性溶液均为两条线(T线和C线),检测100 ng/ml的标准品均为一条线(C线),且T线和C线条带清晰。因此根据37 ℃条件下1 d相当于室温下1周计算[16],本检测卡在室温可以保存12个月。
3讨论
        为了能够准确、快速、简便的检测谷物(小米、玉米糁、麦仁和大米)中AFB1、ZEN和DON,本试验应用GICA法研制出3种试纸条并组装成真菌毒素三联检测卡。该卡在检测样品时,选择能较好溶解AFB1、ZEN和DON的甲醇-PBS缓冲液(7∶3,V/V) 
表43种真菌毒素胶体金试纸条特异性试验结果
Table 4Results of specificity of three kinds test strip    
参考文献
[1]王萍. 黄曲霉毒素免疫胶乳快速检测技术的研究[D]. 武汉:华中农业大学, 2007.
[2]马德宏, 周元军. 饲料中黄曲霉毒素的危害及其控制措施[J]. 上海畜牧兽医通讯, 2007(1): 80-81.
[3]MURATA H, SULTANA , SHIMADA N ,et al. Structure-activity relationships among zearalenone and its derivatives based on bovine neutrophil chemiluminescence[J]. Vet Hum Toxico, 2003, 45(1): 18-20.
[4]IKUNAGA Y, SATO I, GROND S, et al. Nocardioides sp. strain WSN05-2, isolated from a wheat field, degrades deoxynivalenol, producing the novel intermediate 3-epi-deoxynivalenol[J]. Applied Microbiology and Biotechnology, 2011, 89(2):419-427. 
[5]中华人民共和国卫生部. 食品安全国家标准 食品中真菌毒素限量:GB 2761—2011[S]. 北京:中国标准出版社,2011.
[6]熊齐荣, 金涌, 邢仕歌, 等. 胶体金试纸条法快速筛查小麦和玉米中脱氧雪腐镰刀菌烯醇的研究[J]. 食品科技, 2014, 39(2): 292-296.
[7]李翘, 桑丽雅, 陈笑笑, 等. 玉米赤霉烯酮胶体金快速检测试剂板的研制[J]. 食品安全质量检测学报, 2013, 4(2): 457-462.
[8]吴文晔, 徐炜, 李艳, 等. 同时检测两种真菌毒素的胶体金试纸条的研制[J]. 食品工程, 2011(4): 46-49.
[9]SUN Q, ZHU Z, DENG Q M, et al. A “green” method to detect aflatoxin B1 residue in plant oil based on a colloidal gold immunochromatographic assay[J]. Analytical Methods, 2015, 8(3): 564-569.
[10]BELOGLAZOVA N V, SPERANSKAYA E S, WU A, et al. Novel multiplex fluorescent immunoassays based on quantum dot nanolabels for mycotoxins determination[J]. Biosensors and Bioelectronics, 2014, 62(6): 59-65.
[11]ROMANO E L, ROMANO M. Staphylococcal protein a bound to colloidal gold: a useful reagent to label antigen-antibody sites in electron microscopy[J]. Molecular Immunology, 1977, 14(9/10): 711-715.
[12]郑荣, 毛丹, 张道广, 等. HPLC法测定常用食品中玉米赤霉烯酮[J]. 中国卫生检验杂志, 2008, 18(11):2266-2267.
[13]毛丹, 许勇, 张道广, 等. HPLC法测定粮谷中的呕吐毒素[J]. 中国卫生检验杂志, 2007, 17(12):2207-2208.
[14]李迎梅, 孙晓红, 刘彤, 等. 高效液相法检测食品中黄曲霉毒素含量[J]. 中国卫生标准管理, 2014, 5(1):93-94.
[15]余传霖. 现代医学免疫学[M]. 上海:上海医科大学出版社, 1998: 725-726.
[16]VERHEIJEN R, OSSWALD I K, DIETRICH R, et al. Development of a one step strip test for the detection of (dihydro) streptomycin residues in raw milk[J]. Food and Agricultural Immunology, 2000, 12(1): 31-40.
[17]WANG Y, WANG L, ZHANG J, et al. Preparation of colloidal gold immunochromatographic strip for detection of Paragonimiasis skrjabini [J]. PLoS One, 2014, 9(3): e92034.
[18]徐剑宏,祭芳,陆琼娴,等. 谷物真菌毒素的控制策略[J]. 江苏农业学报,2007, 23(6): 642-646.